AlgaeTron藻類生長室

AlgaeTron藻類生長室是一種可以進行藻類和藍細菌精確培養的立柜式振蕩生長室。配備有藻類培養振蕩器。在顯示屏上可以顯示設定的各種光強、溫度等環境參數和實際值。通過電腦中的程序，用戶可對光強，光質，溫度和震蕩強度等進行時間設置，并可模擬晝夜變化等自然培養條件。

AlgaeTron藻類生長室結構緊湊，立地面積小，可以大大節省寶貴的實驗室空間，分為AG130和AG230兩個型號。

應用領域：

l精確藻類或細菌培養

l環境因子脅迫研究

l同質化培養篩選品種

l轉基因藻類性狀研究

l藻類對氣候變化的響應及其機制

儀器特點：

l程序獨立控制的LED光源：

- 白光+遠紅光LED（標準配置）

- 用戶自定義照明調整模式（連續光照、脈沖光照、正弦光照、三角光照）

- 1 % 到100 % 范圍內光照強度精確控制

- 可以秒、小時、天的跨度設置參數

- 用戶自編程功能（可選）

- 極小的發熱量

lLED光源光強遠遠高于傳統燈管，暖白光可達500 µmol(photon)/m².s的；冷白光可達1,000 µmol(photon)/m².s

l用戶自編程：允許設置程序對溫度、光照、振蕩速度和相對濕度（可選）進行自動調控

技術參數：

AG130藻類生長室：

l溫控范圍：
+15 oC to +50 oC (*照明)
+10 oC to +55 oC (*照明) – 可選，溫控升級

lLED光源：25 × 35 cm，白光+遠紅光LED

l*光強：
500 µmol(photon)/m².s 暖白光
1,000 µmol(photon)/m².s 冷白光

l定制光源，如RGB光源、紅藍光源或其它

l用戶自編程：允許設置程序對溫度、光照、振蕩速度和相對濕度（可選）進行自動調控

l外部尺寸：100 × 55 × 62 cm (H × W × D)

l內部尺寸：69 × 42 × 40 cm (H × W × D)

l內部容積：124 L

l培養面積：0.14m²

l重量：55 kg

l制冷劑：R134a

l壓縮機：220 - 240 V; 50 Hz; 160 W ; 0.70 A

l功耗：500 W

AG230藻類生長室：

l控溫范圍：

+15 oC to +45 oC(振蕩器開，*照明)

+10 oC to +55 oC (振蕩器開，*照明)– 可選，溫控升級

lLED光源： 白光+遠紅光LED，其他光源可定制

-上光源：25 × 35 cm

-兩個下光源：33 × 46 cm

l*光強：

-上光源：500µmol(photon)/m².s，可升級至1000µmol(photon)/m².s（冷/暖白光）或1500µmol(photon)/m².s（冷白光）

-下光源：350µmol(photon)/m².s

l外部尺寸：170 × 60 × 62 cm (H × W × D)

l內部體積：265 L

l培養面積：0.53m²

l用戶自編程：允許設置程序對溫度、光照、振蕩速度進行自動調控

l重量：70 kg

l制冷劑：R600a

l壓縮機：220 - 240 V;50 Hz; 200 W; 1 A

l輸入功率：600 W/900 W

可選功能：

l回轉振蕩器（可選）

l高精度氣體混合系統（可選）：可控制*多4種生長箱中的氣體濃度與流速，標配版可控制空氣/氮氣和CO₂，氣源需用戶自備

l集成葉綠素熒光測量（可選）

l用戶自定義編程控制（可選）：用戶可自定義光強及持續時間，設置多達224種光照的階段性變化，模擬晝夜周期變化、日升日落等自然界中光環境變化以及其他各種任意變化

lDaylight程序升級（可選）：模擬多云天氣

振蕩器（選配）：

l高耐磨損材料

l尺寸：375 × 320 × 125 mm

l平臺尺寸：290 × 258 mm

l重量：8kg

l裝載能力：5kg (14個50ml錐形瓶 / 9個100ml錐形瓶 / 5個250 ml 錐形瓶 / 4個500ml錐形瓶 / 2個1000ml錐形瓶)

l振蕩速度：30 - 500 RPM，可進行數字設定

l定時或持續運轉模式

l自動過熱保護

l工作環境：0-50 oC，80%RH

l配有防滑橡膠墊

l功率：50W

產地：捷克

參考文獻：

1.Singh V, et al. 2019, Phytotoxicity and degradation of antibiotic ofloxacin in duckweed (Spirodela polyrhiza) system. Ecotoxicology and Environmental Safety 179: 88-95

2.Fakhimi N, et al. 2019, Acetic acid is key for synergetic hydrogen production in Chlamydomonas-bacteria co-cultures. Bioresource Technology 289: 121648

3.Kumar A, et al. 2019, Organic radical imaging in plants: Focus on protein radicals. Free Radical Biology and Medicine 130: 568-575

4.Fakhimi N, et al. 2019, Acetic acid uptake rate controls H2 production in Chlamydomonas-bacteria co-cultures. Algal Research 42: 101605

5.Ferro L, et al. 2018, Subarctic microalgal strains treat wastewater and produce biomass at low temperature and short photoperiod. Algal Research 35: 160-167

6.Yunus IS, et al. 2018, Photosynthesis-dependent biosynthesis of medium chain-length fatty acids and alcohols. Metabolic Engineering 49: 59-68

7.Vuorijoki L, et al. 2017, Inactivation of iron-sulfur cluster biogenesis regulator SufR in Synechocystis sp. PCC 6803 induces unique iron-dependent protein-level responses. Biochimica et Biophysica Acta 1861(5): 1085-1098

8.Vuorijoki L, et al. 2017, SRM dataset of the proteome of inactivated iron-sulfur cluster biogenesis regulator SufR in Synechocystis sp. PCC 6803. Data in Brief 11: 572-575

9.Stemmler K, et al. 2016, Growth and fatty acid characterization of microalgae isolated from municipal wastetreatment systems and the potential role of algal-associated bacteria in feedstock production. PeerJ 4:e1780; DOI 10.7717/peerj.1780

10.Zav?el T, et al. 2016, A quantitative evaluation of ethylene production in the recombinant cyanobacterium Synechocystis sp. PCC 6803 harboring the ethylene-forming enzyme by membrane inlet mass spectrometry. Bioresource Technology 202: 142-151

11.Zhang B, et al. 2016, Sustainable Production of Algal Biomass and Biofuels Using Swine Wastewater in North Carolina, US. Sustainability 8(5): 477

12.Amini H, et al. 2016, Numerical and experimental investigation of hydrodynamics and light transfer in open raceway ponds at various algal cell concentrations and medium depths. Chemical Engineering Science 156: 11-23