ELISA試劑盒實驗原理

酶聯免疫吸附測定(enzyme linked immunosorbent assay，ELISA)原理

1971年Engvall和Perlmann發表了酶聯免疫吸附劑測定(enzyme linked immunosorbent 

assay，ELISA)用于IgG定量測定的文章，使得1966年開始用于抗原定位的酶標抗體技術發展成

液體標本中微量物質的測定方法。

大鼠ELISA試劑盒的基礎是抗原或抗體的固相化及抗原或抗體的酶標記。結合在固相載體表面的抗原或抗

體仍保持其免疫學活性，酶標記的抗原或抗體既保留其免疫學活性，又保留酶的活性。在測定

時，受檢標本(測定其中的抗體或抗原)與固相載體表面的抗原或抗體起反應。用洗滌的方法使

固相載體上形成的抗原抗體復合物與液體中的其他物質分開。再加入酶標記的抗原或抗體，也

通過反應而結合在固相載體上。此時固相上的酶量與標本中受檢物質的量呈一定的比例。加入

酶反應的底物后，底物被酶催化成為有色產物，產物的量與標本中受檢物質的量直接相關，故

可根據呈色的深淺進行定性或定量分析。

由于酶的催化頻率很高，故可極大地地放大反應效果，從而使測定方法達到很高的敏感度

如何正確使用酶結合物?

1.酶結合物的稀釋液

在稀釋液中常加入高濃度的無關蛋白質(例如1%BSA或5%脫脂奶粉)，通過競爭抑制酶結合物在

固相載體上的非特異性吸附。一般還加入能夠抑制蛋白質吸附于塑料表面的非離子型表面活性

劑，如吐溫20(0.05%的濃度較為適宜)。

2.正確稀釋酶結合物

酶結合物的合適工作濃度需要通過預實驗來確定，濃度過高易導致本底偏高，濃度過低則會導

致陽性信號的減弱。

酶結合物在使用前稀釋，稀釋后的酶結合物不宜長期保存，因為低濃度的酶結合物極易失

活。